SV1045 T4 多聚核苷酸激酶(3′磷酸酶

產(chǎn)品簡介
T4 多聚核苷酸激酶(3′磷酸酶由專業(yè)試劑供應商北京百奧萊博提供,用于科學研究,我公司的T4 多聚核苷酸激酶(3′磷酸酶品質(zhì)上佳,經(jīng)過多年的開發(fā)生產(chǎn),已然非常成熟,歡迎廣大新老客戶訂購。...
產(chǎn)品詳細介紹
特別提示:包括T4 多聚核苷酸激酶(3′磷酸酶活性缺失)在內(nèi),本公司的所有產(chǎn)品僅可用于科研實驗,嚴禁用于臨床醫(yī)療及其他非科研用途!
產(chǎn)品名稱:T4 多聚核苷酸激酶(3′磷酸酶活性缺失)
英文名稱:T4 polynucleotide kinase (3 phosphatase deficiency)
產(chǎn)品貨號:SV1045
產(chǎn)品規(guī)格:1KU|200U
特性:
DNA 或 RNA 5′ 末端的磷酸化,以便進行連接反應。
DNA 或 RNA 的末端標記,用作探針和進行 DNA 測序
用 T4 多聚核苷酸激酶(M0201)除去 3′ 磷酸基團
T4 多聚核苷酸激酶(缺失 3′ 磷酸酶活性)(M0236)將 3′ 端已經(jīng)磷酸化的單核苷酸 5′ 磷酸化,制備pNp 底物,用于添加到 DNA 或 RNA的 3′ 端
用 T4 多聚核苷酸激酶(缺失 3′ 磷酸酶活性)(M0236)對 3′ 端有磷酸基團的寡核苷酸的 5′ 端進行標記
概述:
T4 多聚核苷酸激酶能夠催化 ATP 的 γ-位磷酸基團轉(zhuǎn)移到寡核苷酸鏈(雙鏈或單鏈 DNA 或 RNA)的 5′ -羥基末端以及 3′ -單磷酸核苷上。T4 多聚核苷酸激酶(M0201)還具有 3′ 磷酸酶活性,將 3′ -磷酸基團從寡核苷酸的 3′ 磷酸末端、脫氧 3′ -單磷酸核苷和脫氧 3′ -二磷酸核苷上水解掉。經(jīng)修飾后的酶(M0236)具有所有激酶的活性,但是缺失了 3′ 磷酸酶活性。
來源:
重組 E. coli 菌株,克隆有 T4 多聚核苷酸激酶或修飾的 T4 多聚核苷酸激酶基因。
反應條件:
1X T4 多聚核苷酸激酶反應緩沖液
[70 mM Tris-HCl(pH 7.6 @ 25℃),10 mM MgCl2,5 mM DTT],37℃ 溫育。
熱失活:65℃ 加熱 20 分鐘。
注意事項:
達到zuì佳酶活力,需要新鮮緩沖液(在舊緩沖液中,由于氧化造成的 DTT 含量減少會降低酶活力)。
放射性標記反應:
50 μl 反應體系中,用 1X T4 多聚核苷酸激酶反應緩沖液、50 pmol 的 γ-[32P] ATP 和 20 單位的酶 37℃ 溫育 30 分鐘可催化 1-50 pmol 的 5′ 末端磷酸化。[33P] ATP 可代替 [32P] ATP 作標記反應。
CTP、GTP、TTP、UTP、dATP 及 dTTP 均可替代 ATP 作為磷酸供體。
DNA 或 RNA 磷酸化反應(放射性和非放射性)操作流程請聯(lián)系我們咨詢。
要提高平齊末端或 5′ 凹陷末端的磷酸化效率,可在加入 T4 多聚核苷酸激酶前,先將 DNA 溶液于 70℃ 加熱 5 分鐘,然后冰上冷卻,并加入 5%(W/V)的 PEG-8,000。
T4 多聚核苷酸激酶需要 ATP 才能發(fā)揮活性,但是為了適用于高活力的放射性標記反應:,在隨酶提供的反應緩沖液中不含 ATP。
一般來說,進行激酶反應之后是連接反應。在這種情況下,T4 多聚核苷酸激酶反應在連接酶反應緩沖液中 37℃ 溫育 30 分鐘即可。反應后的產(chǎn)物可直接進行連接,無需改變緩沖液和進行熱失活。如果連接時需要保持其它 DNA 片段的去磷酸化狀態(tài),則需要在連接反應前熱失活 T4 多聚核苷酸激酶。
質(zhì)保聲明:
T4 多聚核苷酸激酶和 T4 多聚核苷酸激酶(3′ 磷酸酶活性缺失)經(jīng)過嚴格的質(zhì)控檢測,確保該產(chǎn)品具有zuì高的活性和純度。
單位定義:
1 單位即 1 個 Richardson 單位,指 37℃條件下,30 分鐘內(nèi)催化 1 nmol 酸不溶性 [32P] 摻入所需要的酶量(1)。
濃度:
10,000 units/ml。
根據(jù)您的關(guān)注的T4 多聚核苷酸激酶(3′磷酸酶活性缺失),您可能還對以下產(chǎn)品有需求:
名稱:人類cDNA
貨號:WE0227
規(guī)格:100μl(20次反應)
本產(chǎn)品是以人胎盤組織RNA為模板,Oligo(dT)以及Random為引物, 用百奧萊博的高靈敏度的逆轉(zhuǎn)錄酶反轉(zhuǎn)錄得到的PCR即用型cDNA,可用于PCR實驗的陽性對照。純度:OD260/280≈1.8
使用方法:
以下舉例為常規(guī)PCR反應體系和反應條件,實際操作中應根據(jù)模板、引物結(jié)構(gòu)和目的片段大小不同進行相應的改進和優(yōu)化。
1、PCR反應體系:
| 試劑 | 50μl體系 | 終濃度 |
| 10×Taq PCR Buffer with Mg2+ | 5μl | 1× |
| dNTP Mix,2.5 mM each | 4μl | 200μM each |
| Forward Primer,10μM | 2μl | 0.4μM |
| Reverse Primer,10μM | 2μl | 0.4μM |
| Human Placenta cDNA | 5μl | |
| Taq DNA Polymerase,2.5 U/μl | 0.5μl | |
| RNase-Free Water | 補水至50μl |
注意:
1)引物濃度請以終濃度0.1-1.0μM作為設(shè)定范圍的參考。擴增效率不高的情況下,可提高引物的濃度;發(fā)生非特異性反應時,可降低引物濃度,由此優(yōu)化反應體系。
2)鎂離子濃度請以終濃度1.5-3 mM作為設(shè)定范圍的參考。本產(chǎn)品的10×PCR Buffer中已經(jīng)含有15 mM鎂離子,可根據(jù)丌同的引物對和模板來調(diào)節(jié)鎂離子濃度,由此優(yōu)化反應體系。
2、將混合好的液體進行PCR反應。
3、結(jié)果檢測:反應結(jié)束后取5μl反應產(chǎn)物,加入適量上樣緩沖液后進行瓊脂糖凝膠電泳檢測。
儲存條件:-20℃,避免反復凍融
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